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FL3500多功能葉綠素熒光儀

FL3500多功能葉綠素熒光儀是專門用于對藍綠藻或綠藻等微藻，葉綠體或類囊體懸浮物，乃至葉片進行光合作用研究的強大科研工具。儀器具備雙通道測量控制，可控制測量樣品的溫度，并配備單翻轉光（STF），內置多種可用戶自行修改的測量程序，可進行目前國際上對于葉綠素熒光的各種深入機理研究。其核心結構是包含了一個懸浮液標準樣品杯的光學測量頭，內置3組LED光源和1個500 kHz/16位 AD 轉換的PIN二極管信號檢測器。AD轉換的增益和積分時間可以通過軟件控制。檢測器測量葉綠素熒光信號的時間分辨率可高達4 μs（快速版為1μs）。系統配置的光合放氧測量模塊，使其可以對放氧復合物的狀態轉換做更深入研究。

FL3500多功能葉綠素熒光儀配備有4種測量室：標準版、快速版、葉夾版、水下版。主機為雙通道設計，可同時連接任意兩種測量室，大大擴展了葉綠素熒光測量的應用范圍，可以對任何類型的植物樣品進行葉綠素熒光測量。

應用領域：

· 植物光合特性和代謝紊亂篩選

· 生物和非生物脅迫的檢測

· 植物抗脅迫能力或者易感性研究

· 代謝混亂研究

· 光合系統工作機理研究

· 受脅迫植物光合生理應對策略研究

典型樣品：

· 藍藻（藍細菌）

· 綠藻

· 葉綠體懸浮物

· 類囊體懸浮物

· 植物碎片

功能特點：

· 具備雙通道測量控制，可以與各種測量單元如標準版、快速版、葉夾式及水下測量頭等配合使用，各版本的測量頭可互換使用

· 內置多種可用戶自行修改的測量程序，涵蓋目前國際上對于葉綠素熒光的各種一般性研究和深入機理研究

· 配備單翻轉光（STF），可進行QA–再氧化動力學、S狀態轉換等光合機理研究

· 配備高靈敏度檢測器，可進行OJIP快速熒光動力學分析

· 可控制測量樣品的溫度并進行磁力攪拌

技術參數：

· 實驗程序：葉綠素熒光誘導測量；PAM（脈沖調制）測量；OJIP快速熒光動力學測量；QA–再氧化動力學；S狀態轉換；葉綠素熒光淬滅

• 熒光參數：F₀，Fm，Fv，F₀’，Fm’，Fv’，QY(II)，NPQ，ΦPSII，Fv/Fm，Fv’/Fm’，Rfd，qN，qP，ETR等50多項葉綠素熒光參數與圖像，OJIP曲線與F₀、FJ、Fi、Fm、Fv、VJ、Vi、Fm / F₀、Fv / F₀、Fv / Fm、M0、Area、Fix Area、SM、SS、N、Phi_P₀、Psi_₀、Phi_E₀、Phi_D₀、Phi_Pav、ABS / RC、TR₀ / RC、ET₀ / RC、DI₀ / RC等20多項相關參數

· 時間分辨率（采樣頻率）：高靈敏度檢測器，時間分辨率達4μs（快速版為1μs）

· 控制單元：雙通道通用高度精確性自動微處理器，可以與各種測量單元如標準版、快速版、葉夾式及水下測量頭等配合使用（無需另行購買控制單元）

· 測量單元類型：可選擇在一臺主機上配備兩種測量單元同時工作，推薦葉夾版+標準版/快速版或葉夾版+水下版

1.標準版

2.快速版：時間分辨率在標準版的基礎上提高到1 μs，可精確捕捉和描繪快速熒光瞬變過程，使得運用PAM技術對OIJP曲線和光閃熒光誘導的快速動力學測量更加準確高效，能夠更好的計算各種相關參數。

3.葉夾版

專用的葉夾式測量單元，測量區域直徑為12.7mm(0.5 inch)。葉夾式測量單元可以無損地夾持葉片進行測量，而且不會使葉片脫離其原來的微環境。全部所需的光源與檢測器都內置在測量單元進行直接測量，避免了一般的熒光儀使用光纖造成檢測光信號的衰減。

4.水下版

設計用來直接在水下測量諸如水下植物，珊瑚或者海藻等樣品的葉綠素熒光。專用的水下探頭配有用于水下操作的特殊支架，**測量深度為水下1m。

· 測量光閃：標準為波長617nm的橙光或455nm的藍光，光閃時間2–5μs

· 單翻轉飽和光閃：標準光源為630nm的紅光，光閃時間20–50μs

· 持續光化學光：標準為630nm的紅光或455nm的藍光，**光強2500 μmol(photons)/m2.s；

· 遠紅外光源（選配）：用于激發光系統I，波長735nm

· 氧電極（選配）：測量藻類的氧氣釋放

· 每組lED光源強度和時間可通關軟件調控，同時光源可根據研究要求選配

· 溫度控制：TR 2000溫度調節器，控溫范圍0–70℃，精確度0.1℃

· 電磁攪拌：8mm×3mm標準磁力棒

· 樣品試管：底面積10×10mm，容積4ml

· AD轉換器：試管式為500 kHz/16–bit

· FluorWin軟件：定義或創建實驗方案、光源控制設置、數據輸出、分析處理和圖表顯示

典型應用：熒光誘導過程分析

產地：捷克

參考文獻：

§ Functioning of the Bidirectional Hydrogenase in Different Unicellular Cyanobacteria， é Kiss， et al， 2013. Research for Food， Fuel and the Future

§ Excess Ca²⁺does not alleviate but increases the toxicity of Hg²⁺ to photosystem II in Synechocystis sp.(Cyanophyta)， D Zhang， et al， 2013. Ecotoxicology and environmental safety

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§ Destabilization of the Oxygen Evolving Complex of Photosystem II by Al3+， I Hasni， et al， 2013. Photochemistry and Photobiology

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§ Correlations between the temperature dependence of chlorophyll fluorescence and the fluidity of thylakoid membranes， A Tovuu， et al， 2012. Physiologia Plantarum

§ Developmental Defects in Mutants of the PsbP Domain Protein5 inArabidopsis thaliana. JL Roose， et al， 2011. PloS one

§ Inhibition of photosystems I and II activities in salt stress–exposed Fenugreek (Trigonella foenum graecum). M Zaghdoudi， et al， 2011. Journal of Photochemistry and Photobiology B: Biology

§ Productivity correlated to photobiochemical performance of Chlorella mass cultures grown outdoors in thin–layer cascades. J Masojídek， et al， 2011. Journal of Industrial Microbiology & Biotechnology

§ Binding Stoichiometry and Affinity of the Manganese–Stabilizing Protein Affects Redox Reactions on the Oxidizing Side of Photosystem II. JL Roose， et al， 2011. Biochemistry