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熒光成像冷CCD相機 TCH-1.4ICE & TCH-1.4CICE
良好的制冷技術單個像素點達6.45微米X 6.45微米
| TCH-1.4ICE | TCH-1.4CICE | |
| 圖像傳感器型號 | Sony ICX285AL | Sony ICX285AQ |
| 彩色/黑白 | 黑白 | 彩色 |
| CCD/CMOS 尺寸 | 2/3" | 2/3" |
| 像素大小(μm) | 6.45×6.45 | 6.45×6.45 |
| 有效像素 | 141萬 | 141萬 |
| **分辨率 (H×V) | 1360×1024 | 1360×1024 |
| 掃描模式 | 逐行掃描 | 逐行掃描 |
| 快門模式 | 電子快門 | 電子快門 |
| 幀頻 | 13fps(1360 × 1024 全分辨率) | 13fps(1360 × 1024 全分辨率) |
| 15fps (680 × 520，2 × 2Bin) | 15fps (680 × 520，2 × 2Bin) | |
| 彩色深度 | — | 36bit |
| 模數轉換 | 12 bit | 12 bit |
| 曝光控制 | 自動/手動 | 自動/手動 |
| 曝光范圍 | 0.1ms-60min. | 0.1ms-60min. |
| 白平衡控制 | 自動/手動 | 自動/手動 |
| 動態范圍 | 67dB | 66dB |
| 工作溫度 | 0-60℃ | 0-60℃ |
| 工作濕度 | 45%-85% | 45%-85% |
| 貯存溫度 | -20-70℃ | -20-70℃ |
| 制冷方式 | 半導體制冷 | 半導體制冷 |
| 制冷溫度 | -10℃ | -10℃ |
| 操作系統支持 | Windows / Linux / Mac | Windows / Linux / Mac |
| 光學接口 | C接口 | C接口 |
| 數據接口 | USB2.0/480Mb/s | USB2.0/480Mb/s |
活體生物熒光成像主要有三種標記方法：熒光蛋白標記、熒光染料標記和量子點標記。熒光蛋白適用于標記腫瘤細胞、病毒、基因等。通常使用的是GFP、EGFP、RFP（DsRed）等。熒光染料標記和體外標記方法相同，常用的有Cy3、Cy5、Cy5.5及Cy7，可以標記抗體、多肽、小分子藥物等。量子點標記作為一種新的標記方法，是有機熒光染料的發射光強的20倍，穩定性強100倍以上，具有熒光發光光譜較窄、量子產率高、不易漂白、激發光譜寬、顏色可調，并且光化學穩定性高，不易分解等諸多優點。量子點是一種能發射熒光的半導體納米微晶體，尺寸在100nm以下，它可以經受反復多次激發，而不像有機熒光染料那樣容易發生熒光淬滅。
但是不同熒光波長的組織穿透力不同，如圖1所示，各種波長的光對小鼠各種器官的透過率，都在波長>600nm時顯著增加。而如圖2所示，在650nm-900nm的近紅外區間，血紅蛋白、脂肪和水對這些波長的光的吸收都保持在一個比較低的水平。因而，選擇激發和發射光譜位于650nm-900nm的近紅外熒光標記（或至少發射光譜位于該區間），更有利于活體光學成像，特別是深層組織的熒光成像。（推薦文獻： Nature Method， 2005， 2: 12 如何選擇合適的熒光蛋白； Science， 2009， 324: 804 錢永建教授研究成果-近紅外熒光蛋白，非常適合活體生物熒光成像）。
選擇適當的CCD鏡頭，對于體內可見光成像是非常重要的。如何選擇活體熒光性價比**的CCD呢？CCD有一些重要的參數：
1) CCD像素。CCD像素決定成像的圖片質量，像素越高，成像質量越好。由于熒光背景光較強，產生非特異性雜光干擾明顯，需要配有高分辨率CCD的相機。
2) 前照式還是背照式CCD。一般而言，背照式CCD具有更高的量子效率，但是只有在檢測極弱光信號優勢明顯（如活體生物發光成像），但在強光檢測中與前照式CCD無本質差別，還更容易光飽和，并且其成本較高的弱勢使其不屬于熒光檢測常規要素。
3) CCD溫度。制冷CCD分為兩種：恒定低溫制冷CCD和相對低溫制冷CCD。恒定低溫制冷CCD擁有穩定的背景，可以進行背景扣除；而相對低溫制冷CCD由于背景不穩定，一般不能進行有效的背景扣除。CCD制冷溫度越低，產生的暗電流越小，如圖3所示，當制冷溫度達到-29℃時，產生的暗電流已經低至0.03e/pixel/s。由于儀器自身產生的噪音主要由暗電流熱噪音和CCD讀取噪音組成，而目前CCD讀取噪音*低只能降至2e rms；因而更低溫度的CCD并不能明顯的降低背景噪音，而成本卻極大提高。
4) CCD讀取噪音和暗電流。CCD讀取噪音和暗電流熱噪音是成像系統產生背景噪音的主要因素，但是在熒光成像中，*主要的背景噪音卻是來自于熒光背景光。熒光成像信噪比的改善主要依賴于熒光背景光的有效控制和背景扣除技術（圖4）。 ‘
自發熒光的干擾
在活體熒光成像中，動物自發熒光一直困擾著科研工作者。在擁有激發光多光譜分析功能的活體成像系統出現以前，科學家們被迫采取各種方法來減少動物自發熒光，比如：采用無熒光素鼠糧飼養小鼠、使用裸鼠等。現在，擁有激發光多光譜分析功能的活體成像系統，能夠輕松進行熒光信號的拆分，如圖5，食物、膀胱、毛發和皮膚的自發熒光能夠被有效的區分和剝離。激發光多光譜分析也可用于多重熒光標記檢測，實現一鼠多標記，降低實驗成本，并有效提高數據的可比性。
熒光信號的準確定位
如圖6所示，如果信號和靶標100%重合，這是科學家所追求的；但是，如果信號并不和靶標重合，而又誤以為正確定位時，這是科學的噩夢。也許，一個錯誤定位的信號，比沒有信號更加糟糕！
而同時擁有結構成像（如X光、MRI）和功能成像功能（如熒光、發光、同位素）的多功能活體成像系統，則讓您擺脫困境，準確定位熒光信號。如圖7所示，小鼠的X成像經過胃腸造影，可清晰地獲得胃腸的形狀和位置，將熒光信號和X光疊加，熒光和胃腸重合，可準確判定熒光定位在胃腸。
